精液分析是评估男子生育力的重要方法，也是男科疾病诊断、疗效观察的实验依据，但精液分析的各参数也不是特异的，它并不能够确定达到受精位置的少数精子的受精能力，因此要正确评估男子生育能力还需要结合临床和其它精子功能检测指标进行综合评估。
　　精液的分析结果易受射精频度，温度，实验室条件，检验人员的技术熟练程度，主观判断能力等诸多因素影响，其结果易发生偏差，因此精液采集与分析必须严格按照适宜的标准化程序进行，才能提供受检者临床状况的必要信息。
　　不育夫妇初诊时，男方至少要按标准程序做两次精液分析，两次分析如有明显差异，还要进行第三次分析。
　　精液标本可能含有致病菌和病毒（如HIV病毒，肝炎病毒，单纯疱疹病毒等），因此应视为生物危险品。实验室技术人员应注意防护，要使用一次性手套和各种器皿。
　　用过的器皿要消毒处理。精液培养，用于生物测定，宫腔内受精或体外受精，在处理过程中必须严格用无菌材料和无菌操作。
　　一、精液标本的采集和运送
　　精液采集规范化是做好精液分析的前提条件，因此在精液采集前务必要详细告知受检者有关精液采集和运送的方法及注意事项。
　　1、标本采集前应禁欲至少48小时，但不超过7天。为减少精液分析结果的波动，禁欲的天数应尽可能恒定。每一份精液分析报告都应写明：病人姓名、禁欲时间、标本采集的日期和时间、标本采集是否完整以及标本从采集到分析的时间间隔等。
　　2、初检者应做两次精液分析，两次精液采集的间隔应大于7天，但不能超过3周。如果两次的结果有明显的差异，应再取标本进行第三次分析。
　　3、标本的采集最好在实验室附近的取精室内单独进行。否则，应在采集后1小时内送到实验室。
　　4、最好用手淫的方法取精液，收集精液要用对精子无毒性作用的广口玻璃或塑料容器中。温度应保持在20~40℃,以避免降低精子活力。如果要做微生物学方面的检查，病人应先排尿并洗净双手和阴茎，用无菌容器收集。
　　5、如手淫取精有困难，可用特制的避孕套进行精液采集。因日常用的乳胶避孕套会影响精子的存活，故不能用于采集精液。性交中断法也不宜用于采集精液，因为射精最初部分可能丢失，而这部分精子密度通常是最高的。而且，标本会受到女性生殖道内细菌和微生物的污染；同时酸性的阴道分泌物对精子活力也会产生不利的影响。
　　6、精液采集一定要完整，不完整的精液不宜进行分析。
　　7、标本在运送到实验室的过程中，温度应保持在20℃以上，但不能超过40℃。
　　8、收集精液的容器必须标明受检者姓名（和/或身份证号码）以及标本采集的日期和时间。
　　二、精液的肉眼观察
　　1、精液的液化
　　室温下，精液射出体外立即会凝固，随后进入液化过程，此过程多在15分钟内完成，如超过60分钟精液不液化应视为异常。因此，建议取精后20分钟、30分钟、60分钟观察液化情况并记录液化所需时间，及是否完全液化。正常精液可以含有不液化的胶冻状颗粒，这一现象没有临床意义。
　　精液液化时间延长，不完全液化或不液化，通常与前列腺分泌功能低下，蛋白溶解酶缺乏有关。
　　精液不液化，需另行处理，可用机械混匀或菠萝蛋白酶消化（菠萝蛋白酶1g/L）。
　　加入等量的培养液并重复用加样器吹打也可以使某些标本液化。应注意的是，所有这些处理方法都可能影响精浆的生化、精子活力和精子形态学的测定结果。
　　2、精液的外观
　　精液标本液化后首先应在室温下肉眼观察其外观。正常的精液质地均匀、呈灰白色，禁欲时间长精液可略带黄色。如果精子密度非常低或无精子，精液可显得稀薄。如有红细胞，精液可呈红褐色。如有黄疸或服用某些维生素，精液可呈黄色。
　　3、精液量
　　精液量可用锥形底的刻度量筒测量。正常男子每次射精，精液量不少于2ml。精液量少常与取精时部分精液丢失有关。如精液无丢失，量少且不凝固，无精子，体检时输精管缺如，应考虑精囊腺先天发育不全。
　　4、精液粘稠度
　　评估粘稠度的方法可用一宽孔的5ml吸管轻轻吸入精液，正常精液由于重力作用在管口形成不连续的小滴，粘稠度异常时液滴会形成＞2cm的拉丝。
　　检测粘稠度的另一个方法，是将一玻璃棒插入精液，提起玻璃棒，并观察拉丝长度，拉丝长度超过2cm视为异常。高粘稠度精液可阻碍精子的运动。
　　5、PH值
　　PH值应在射精后1小时内测定。将一滴精液滴在PH试纸上（PH试纸范围为6.1～10.0或6.4～8.0），30秒后，浸湿区域的颜色应该均匀一致，与标准带比较读出其PH值。无论使用哪种PH试纸，都应该用已知标准核查其准确性。
　　三、精液的显微镜检查
　　精液显微镜检包括精子密度、精子活力、精子存活率、精子凝集、非精子细胞成分的测定和精子的形态学分析。
　　建议精液镜检使用相差显微镜。普通光学显微镜亦可，但要调好聚光器。
　　1、镜检标本的制备
　　精液取样的体积和盖玻片的尺寸应标准化，以使精液在大约20μm的厚度下进行分析。在精确检测精子密度之前，应粗略测定精子密度。具体方法是：
　　用加样器将10μl的精液滴在干净载玻片上，再盖上22L×22L的盖玻片。盖玻片的重量使标本展开以达到最佳观察效果，注意避免在盖玻片和载玻片之间产生气泡。
　　放置1分钟使其稳定。检测可在20～24℃室温下进行，由于温度会影响精子的活力分级，因此实验室的温度必须标准化。精子活力和运动速度与温度高度相关，建议进行活力的评估时，最好使用保温镜台，台面温度恒定在37℃。
　　制备好的标本应先在100倍镜下观察是否有粘液丝形成、精子凝集以及标本在载玻片上展开的是否均匀，然后在400倍镜下进行检查。
　　2、精子密度的初检
　　在精确计数精子密度前要进行精子密度的初检，初检结果将作为精液稀释倍数的依据。不同显微镜放大400倍视野的直径是不同的，一般直径范围为250～400μm，相当于1～2.5nl，厚度为20μm的样本。
　　视野的直径可由微标尺或记数池中的格子确定。计数每个视野的精子个数，乘以106/ml就是粗略估算的精液标本的精子密度。此估算结果用来决定用血细胞记数板测精子密度的稀释倍数：200个精子，1：50稀释。
　　如果每个视野的精子数目差异较大，提示标本是不均匀的。在这种情况下，精液标本应再次混匀，重新取样、检测。精液粘稠度异常、液化不全、精子在粘液丝中聚集或精子凝集都会影响精液混匀。
　　如果精子数目少（400倍镜下每视野少于1～2个），可以用离心方法浓缩标本后再测定精子密度。取1ml精液（或尽可能多的精液）600g离心15分钟。弃去已知体积的精浆，充分混匀沉淀后计数。
　　最终密度根据弃去的精浆体积进行校正。标本离心后也可以进行精子活力和形态学方面的评估。如果离心浓缩后精子数目还少（每视野少于1～2个），报告精子密度为3000g离心15分钟。只有当所有沉渣重新悬浮，经彻底和系统检查后发现无精子，这时才能作出无精子的判断。
　　3、精子活力的评估
　　精子活力是指精子前向运动的能力，为便于操作将精子活力分为a、b、c、d四级。
　　“a”级：快速前向运动（即37℃时速度≥25μm/s,或20℃速度≥20μm/s）。
　　“b”级：慢速或呆滞的前向运动。
　　“c”级：非前向运动。